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Curso Superior Universitario en Operaciones de Laboratorio

Universidad Católica San Antonio de Murcia


475 Horas


19 ECTS


Formato PDF


El análisis de los líquidos biológicos es parte fundamental en la investigación diagnóstica de muchos pacientes. Los datos clínicos obtenidos del correcto procesamiento de estos fluidos, así como la exactitud de los resultados de las determinaciones realizadas son esenciales para orientar a un diagnóstico apropiado y administrar la terapia adecuada a estos pacientes. El estudio de este tipo de muestras requiere de armonización y uniformidad en los procedimientos, ya que existe variabilidad en todas las fases del análisis y nos obliga a adoptar medidas de estandarización en la práctica diaria cumpliendo unas recomendaciones de calidad. 

Los líquidos biológicos tienen diferentes constituyentes celulares y bioquímicos en equilibrio corporal dinámico. La concentración de algunos analitos es similar a la plasmática, así como la actividad de ciertas enzimas, sin embargo hay otros constituyentes que difieren y les hacen ser característicos de cada fluido. Sumando la información que nos aportan los estudios morfológicos, bioquímicos y microbiológicos de los líquidos biológicos, junto a su aspecto externo permitirá la clasificación del mismo como normal o patológico, y la elaboración de un informe de laboratorio importante para el apoyo clínico. Se incluyen los exámenes realizados de manera rutinaria por parte del laboratorio clínico en muestras de líquido cefalorraquídeo, líquido de cavidades serosas (ascítico, pleural, pericárdico) y líquido sinovial. 

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Duración

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El alumno dispondrá de un tiempo mínimo de 1 mes para realizar el curso universitario y un máximo de 6 meses.

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Campus Virtual 24/7

Siempre que tenga internet, podrá conectarse y realizar su formación desde cualquier lugar y a cualquier hora.

Opción a Prácticas

Si realiza su matrícula con ESHE tendrá la opción de contratar prácticas en uno los 300 centros con convenio. Más Info.

Plan de estudios

Avances en el estudio de líquidos biológicos por el laboratorio clínico

Tema I. Introducción:

  • Introducción.

Tema II. Líquido cefalorraquídeo:

  • Introducción.
  • Recolección y manipulación de la muestra.
  • Examen macroscópico.
  • Examen microscópico.
  • Estudio microbiológico.
  • Exámenes bioquímicos.
    • Glucosa.
    • Proteínas: totales, albúmina, inmunoglobulinas, cadenas ligeras libres, β-amiloide, proteína tau, transferrina-τ, β-traza y bandas oligoclonales.
    • Lactato.
    • Enzima Adenosina desaminasa (ADA).
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema III. Líquidos de las cavidades serosas:

  • Introducción.
  • Líquido ascítico.
    • Examen macroscópico.
    • Examen microscópico.
    • Estudio microbiológico.
    • Exámenes bioquímicos.
  • Líquido pleural.
    • Examen macroscópico.
    • Examen microscópico.
    • Estudio bioquímico.
    • Estudio microbiológico.
  • Líquido pericárdico.
    • Examen macroscópico.
    • Examen microscópico.
    • Estudio microbiológico.
    • Estudio bioquímico.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema IV. Líquido sinovial:

  • Introducción.
  • Examen macroscópico.
  • Examen microscópico.
    • Recuento celular y fórmula diferencial.
    • Examen de cristales.
  • Examen bioquímico.
  • Estudio microbiológico.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Avances en importancia de la determinación de los elementos traza por el laboratorio

Tema I. Introducción:

  • Introducción.

Tema II. Cobre:

  • Introducción.
  • Metabolismo del cobre.
  • Enfermedad de Wilson.
    • Manifestaciones clínicas de la enfermedad.
    • Diagnóstico de la enfermedad de Wilson.
    • Técnicas de imagen.
    • Estudio genético.
    • Tratamiento.
  • Enfermedad de Menkes.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema III. Zinc:

  • Introducción.
  • Metabolismo del zinc.
  • Patologías asociadas a la deficiencia o toxicidad de zinc.
  • hipozinquemia infantil.
  • Pruebas de laboratorio en el diagnóstico de la deficiencia de zinc.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema IV. Hierro:

  • Introducción.
  • Metabolismo del hierro.
  • Degradación de los hematíes por los macrófagos.
  • Transporte.
  • Captación celular.
  • Depósitos de hierro.
  • Excreción.
  • Regulación de la homeostasis del hierro.
  • Enfermedades por deficiencia de hierro.
    • Etiología.
    • Manifestaciones clínicas.
    • Diagnóstico.
  • Enfermedades por sobrecarga de hierro.
    • Manifestaciones clínicas de la sobrecarga férrica.
    • Diagnóstico en el laboratorio clínico de la sobrecarga férrica.
    • Tratamiento.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema V. Selenio:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema VI. Aluminio:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema VII. Arsénico:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema VIII. Cadmio:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema IX. Mercurio:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema X. Plomo:

  • Introducción.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema XI. Consideraciones preanalíticas de los elementos traza:

  • Introducción.
  • Análisis de plasma.
  • Análisis de suero.
  • Análisis de orina.
  • Análisis de pelo.
  • Análisis de tejidos.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Tema XII. Técnica de determinación de los elementos traza:

  • Introducción.
  • Antecedentes de la espectroscopía de absorción atómica.
  • Espectrometría de absorción atómica de llama (FAAS).
  • Espectrometría de absorción atómica de horno de grafito (ETAAS).
    • Interferencias del análisis por espectrometría de absorción atómica.
    • Métodos de corrección de fondo.
    • Concentración característica y límite de detección.
  • Emisión atómica con fuentes de plasma de acoplamiento inducido (ICP-OES).
  • La espectrometría de masas con plasma de acoplamiento inducido (ICP-MS).
  • Determinación del hierro.
    • Limitaciones del análisis-interferencias.
  • Resumen.
  • Autoevaluación.

Avances en investigación y diagnóstico de las principales técnicas de laboratorio de biología molecular

Introducción.
Técnicas de diagnóstico citogenético:

  • Cariotipo y técnicas de bandeo.
  • FISF y pintado cromosómico.
  • Técnicas de arrays:
    • Array-CGH.
    • Array de SNP.

PCR y adaptaciones:

  • Reacción en cadena de la polimerasa.
  • Visualización de productos de PCR.
  • Variantes de PCR:
    • PCR múltiplex.
    • PCR anidada.
    • PCR con transcriptasa inversa (RT-PCR).
    • PCR inversa.
    • PCR en tiempo real (qPCR).
    • QF-PCR.
    • Long PCR.
    • PCR digital.

Otras técnicas de hibridación:

  • Enzimas de restricción.
  • Hibridación “in situ”.
  • Técnicas de transferencia (blotting):
    • Southern y Northern.
    • Dot-blot.

Técnicas de secuenciación:

  • Secuenciación Sanger.
  • Next generation sequencing (NGS).

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Con este usuario de demostración, solo tendrás acceso a un número limitado de contenidos SCORM, los cuales se caracterizan por ser 100% On-line y reproducibles desde cualquier dispositivo con acceso a internet, ya sea un smartphone, una tablet, un portátil o un ordenador.

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Metodología

El alumno puede acceder al contenido del programa formativo en cualquier momento. El Campus Virtual está disponible 24 x 7 todos los días de la semana. Además, La plataforma es responsive, se adapta a cualquier dispositivo móvil, tablet u ordenador. Durante todo el programa, el alumno contará con el apoyo de nuestro departamento de Tutorías. Tendrá asignado un tutor/a personal con el que podrá contactar siempre que lo necesite para resolver dudas, mediante email: ([email protected]), teléfono: 656 34 67 49, WhatsApp: 656 34 67 49 o desde el chat que incorpora la propia plataforma.

Contenido y material

Nuestro centro de formación online (PDF) presumen de una actualización constante e inmediata de sus contenidos, algo que la formación presencial no puede ofrecer de la misma forma. Por otro lado, la posibilidad de integrar contenidos de diferentes soportes (textos, imágenes, resúmenes, esquemas y algoritmos) enriquece los programas formativos y ofrece muchísimas posibilidades adicionales a la formación tradicional.

Técnica y procedimiento

Todos nuestros programas tienen una previa selección pedagógica junto al equipo de docentes y maquetación, te presentamos las técnicas más novedosas, los últimos avances científicos, al plano de la actualidad profesional, con el máximo rigor, enfoque práctico, explicado y detallado para tu asimilación y comprensión, los cuales verlos las veces que quieras y consultar al instante con el tutor asignado.

Bibliografía adicional

Artículos recientes, documentos de investigación, tesinas fin de grado y fin de máster, y tesis doctorales, guías de práctica clínica, consensos internacionales..., en nuestra biblioteca virtual tendrás acceso a todo lo que necesitas para completar tu formación.

Casos simulados reales

Para captar la atención y conseguir que todos nuestros estudiantes no solo comprendan, sino que logren consolidar la información que nuestros autores y docentes le están facilitando, estos hacen uso de diferentes técnicas para conseguirlo.

Resúmenes

De forma paralela a la asimilación de los contenidos, enlazando y resaltando aquellos aspectos más relevantes los presentamos de manera atractiva y dinámica en forma de audio, vídeos, imágenes, esquemas y mapas conceptuales con el fin de afianzar el conocimiento.

Guía rápida de actuación

El equipo de contenidos y docencia selecciona aquellos documentos nacionales e internacionales considerados como imprescindibles, consensuados por las sociedades especializadas en la materia y presentarlos en forma de fichas o guías rápidas de actuación para facilitar su comprensión.

Foros de discusión

Todos nuestros programas académicos disponen de foros en los cuales se desarrollan temas relacionados con las revisiones bibliográficas y la combinación de metodologías de investigación.

Evaluaciones

La evaluación estará compuesta de 166 test de opción alternativa (A/B/C).

El alumno debe finalizar esta formación online y hacerlo con aprovechamiento de al menos un 50% tanto de los tests planteados en el mismo, que se realizarán a través de la plataforma virtual online.

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Acreditación

La Universidad Católica San Antonio de Murcia expedirá un diploma a todos los alumnos que finalicen un Experto o Curso Universitario Online. El título será enviado con la veracidad de la Universidad acreditadora.

Validez del diploma

Los títulos y diplomas de la Universidad Católica San Antonio de Murcia son reconocidos a nivel nacional e internacional gracias a su acreditación. Todos los diplomas tienen en la parte inferior un Sistema de Validación de Diplomas compuesto por una URL de verificación que muestra todos los datos de validez del título (Nombre completo, DNI, nombre de la formación, créditos ECTS). Se puede abrir este enlace desde cualquier dispositivo. Asimismo, se puede verificar la autenticidad del diploma mediante la consulta de los registros de la Universidad o mediante la verificación de los sellos y firmas presentes en el título.

Modelo de diploma

Certificado acreditativo

Claustro

Celia Zafra Romero

Graduada en Enfermería.

Máster de enfermería en quirófano y cuidados intraoperatorios. Experto universitario en nefrología, diálisis y trasplante. Experto universitario en cuidados intensivos en enfermería. Especializada en soporte vital adulto y pediatrico y desfibrilación semiautomática. Especialista en cuidados sociosanitarios internacionales.

A quién va dirigido

De la misma forma, este programa formativo a distancia también está dirigido a todos aquellos auxiliares o técnicos superiores con categorías profesionales como pueden ser:

  • Técnico Superior en Laboratorio de Diagnóstico Clínico.

Ediciones

El alumno será incluido en la edición del mes en el que finalice su formación (siempre y cuando cumpla el plazo mínimo).

IMPORTANTE: Con el fin de cada edición, cada mes comenzarán nuevas ediciones.

Requisitos de acceso

  • DNI, TIE o Pasaporte.
  • Documento de pago de tasas de matrícula.

Objetivos

Generales

Conocer los líquidos de las cavidades serosas...

Los líquidos de las cavidades serosas son ultrafiltrados del plasma, y los vamos a encontrar en la cavidad peritoneal, pleural y pericárdica. Estas cavidades corporales están delimitadas por una membrana serosa parietal y una visceral, constituidas por una capa de tejido conjuntivo con numerosos capilares y vasos linfáticos, y una capa superficial de células mesoteliales. En condiciones fisiológicas, existe una pequeña cantidad de líquido en cada una de estas cavidades permitiendo el movimiento de las vísceras.

 

Estos líquidos tienen procesos de formación dinámicos que están controlados por la presión oncótica o coloidosmótica (producida por las proteínas plasmáticas), por la permeabilidad de los capilares en la membrana parietal, la presión hidrostática en estos capilares y la absorción llevada a cabo por el sistema linfático. La presión hidrostática de la sangre es aquella que fuerza al plasma a filtrarse hacia las cavidades, mientras que las proteínas circulantes en el plasma ejercen la fuerza en sentido opuesto. La permeabilidad del endotelio capilar regula la velocidad de formación y composición proteica del ultrafiltrado, aumentando el desplazamiento de proteínas sanguíneas si se incrementa la permeabilidad endotelial. Si el fluido extravasado es rico en proteínas favorecerá mayor acumulación de líquido en la cavidad.

Cuando se alteran los mecanismos fisiológicos responsables de la formación o absorción se produce un acúmulo denominado derrame, e indica un proceso patológico.

Comprender las consideraciones preanalíticas de los elementos traza...

Tan importante es la precisión y exactitud de la determinación de los elementos trazas como evitar los errores preanalíticos. Las bajas concentraciones de los elementos traza en el organismo en contraste con las altas concentraciones en las que se encuentran algunos de ellos fuera del organismo, hacen que se requiera para su análisis unas condiciones especiales de obtención y manipulación de los especímenes para asegurar la fiabilidad de los resultados.

El principal problema preanalítico en la determinación de elementos traza es la contaminación, debido a que se encuentran en concentraciones muy bajas en el cuerpo y problemas en la obtención y manipulación de la muestra producen la contaminación de la muestra. Para la determinación de los elementos traza es imprescindible:

  • Selección de una muestra adecuada: Variable según el metal a estudiar, y que refleje los depósitos corporales de dicho elemento. De forma habitual se utiliza la sangre.
  • Recopilación y proceso sin contaminación.
  • Se recomienda la extracción de la sangre entre las 8 y las 10 de la mañana, debido a que algunos elementos traza presentan ritmo circadiano (Zn, Cu, Fe).
  • No se deben utilizar desinfectantes con iodo.
  • Se recomienda el uso de jeringas de polipropileno y agujas de titanio, níquel o acero inoxidable.
  • Deben evitarse los activadores de la coagulación, los geles separadores y los anticoagulantes. Si se necesitan, como en el caso del plomo, los más adecuados son EDTA y heparina.
  • Los tubos utilizados son tubos de vacío específicos para elementos traza, y se deben extraer los últimos.
  • La hemólisis ha de evitarse en aquellos elementos en los que la concentración intraeritrocitaria es al menos diez veces superior a la sérica (por ejemplo: Fe, Zn, Mn).

Análisis de plasma: Como norma general se hará la toma de muestra tras un ayuno de entre 10 y 12 horas previas a la extracción, habiendo mantenido en los 10 días anteriores un régimen de vida y alimentación igual al habitual en el paciente. La sala donde se realice la extracción debe estar especialmente limpia para evitar posibles contaminaciones. La hora de extracción más adecuada es a primera hora de la mañana para evitar variaciones en los elementos que muestran ritmos circadianos (Zn, Cu, Fe…). El personal que realice la extracción debe disponer de guantes que no desprendan partículas de talco u otros elementos. La manera óptima de realizar la extracción consiste en emplear jeringas de plástico (polipropileno incoloro) y agujas de titanio o acero inoxidable. Las jeringas no deben tener ningún componente de goma. Antes de la venopunción ha de limpiarse la zona con alcohol, dejando que se evapore, evitando siempre la utilización de desinfectantes que contengan yodo. Si se van a extraer varios tubos de sangre, extraer la sangre para el análisis de elementos traza en último lugar; si no es así, extraer previamente un tubo de sangre y desecharlo.

Análisis de suero: Las condiciones generales son las mismas que las citadas anteriormente, evitando siempre la producción de hemólisis, especialmente en el análisis de elementos en los que la concentración intraeritrocitaria es, al menos, diez veces superior a la sérica (Fe, Zn, Mn). Si se van a extraer varios tubos, extraer la sangre para el análisis de elementos traza en último lugar; si no, extraer previamente un tubo de sangre y desecharlo. Una vez realizada la venopunción con tubos de vacío, permitir que se produzca la coagulación durante 20 minutos. Posteriormente, separar el suero tras centrifugación a 2.500 rpm, durante 10-15 minutos, manteniendo siempre el tubo cerrado. Inmediatamente, se decantará en los tubos de polipropileno incoloros de cierre hermético especiales para elementos traza. Puede utilizarse una pipeta de polipropileno incoloro, libre de cualquier tipo de polvo o partícula, para trasvasar el suero a los tubos. El volumen mínimo de muestra será de 0,5 ml, siendo 2 ml el volumen recomendado. Volúmenes próximos al mínimo impiden la repetición de la analítica.

Análisis de orina: La muestra idónea es la orina de 24 horas. Por los problemas que plantea su obtención, se puede aceptar la de primera hora de la mañana, que se debe recoger emitiéndola directamente en dos recipientes de 20 ml de polipropileno incoloro. Cuando no sea posible esto, para su recopilación se utilizará un envase específico de orina y de este se transvasará a los recipientes correspondientes. Por poder constituir una fuente de contaminación de la muestra, no se utilizarán otro tipo de envases no específicos para la recopilación de orina. El volumen mínimo de muestra será de 3 ml, siendo 40 ml el volumen de muestra recomendado. Volúmenes próximos al mínimo impiden la posibilidad de repetición de la analítica. Al final de la recopilación, comprobar que los tubos queden herméticamente cerrados para evitar posibles pérdidas o contaminaciones de su contenido.

Análisis de pelo: Debe ser recopilado de una zona lo más cercana posible al cuero cabelludo, preferiblemente zona de la nuca. Lo idóneo, es obtener una muestra lo más representativa posible, tomando la misma de varios puntos hasta conseguir una cantidad equivalente a una cucharada colmada de café. Cuando se trata de pelo largo, obtener solo dos centímetros de cabello contados a partir de la raíz. El análisis no es fiable si el pelo ha sido teñido, blanqueado o, en general, tratado en los últimos dos meses. Como alternativa puede ser utilizado el vello púbico o axilar. Los contaminantes ambientales pueden adherirse al cabello siendo difícil la discriminación con el contenido interior del mismo.

Análisis de tejidos: Los especímenes deben obtenerse con los mismos cuidados que los sanguíneos, por lo que el personal que lo obtenga debe evitar cualquier tipo de contaminación. Se deben utilizar bisturíes de acero inoxidable lavados con agua desionizada. Inmediatamente después de la toma, depositar el espécimen en un envase de plástico (polipropileno) incoloro, de cierre estanco y libre de elementos traza. No son adecuados los especímenes de tejidos conservados en formol, alcohol u otros fijadores, o los procedentes de inclusiones de parafina. La adición de solución salina también puede contaminar el espécimen. En el caso de especímenes obtenidos por punción-aspiración con aguja fina conviene observar los mismos cuidados que para los especímenes obtenidos por biopsia percutánea o necropsia, aunque aquí, el peligro de contaminación es más elevado debido a la poca cantidad de tejido disponible. En el caso de ciertos metales ultratraza (Cr y Ni), la aguja debe estar recubierta interiormente de silicona.

Entender las principales técnicas de diagnóstico citogenético...

La citogenética es el campo de la genética que se encarga de estudiar la estructura, función, comportamiento de los cromosomas y sus enfermedades relacionadas. Cada cromosoma consta de dos cromátidas, cada una de ellas con dos brazos que confluyen en el centrómero. La posición del centrómero determinará la longitud de los brazos largo (“q”) y corto (“p”), y clasifica los cromosomas de cuatro formas básicas:

  • Metacéntrico: ambos brazos tienen la misma longitud estando situado el centrómero en la mitad.
  • Submetacéntrico: en este caso las longitudes de los brazos son desiguales, con el centrómero más próximo a uno de los extremos.
  • Acrocéntricos: el centrómero está situado muy cercano al extremo con un brazo muy corto.
  • Telocéntricos: solamente se aprecia un brazo del cromosoma al estar el centrómero en uno de los extremos.

 

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